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GB4789.2-2010食品衛(wèi)生微生物學(xué)檢驗菌落總數(shù)測定

發(fā)布時間:

2022-12-27

作者:


GB4789.2-2010食品衛(wèi)生微生物學(xué)檢驗菌落總數(shù)測定
 
食品安全國家標準食品微生物學(xué)檢驗菌落總數(shù)測定
 
Nationalfoodsafetystandard
Foodmicrobiologicalexamination:Aerobicplatecount
 
本標準代替GB/T4789.2-2008《食品衛(wèi)生微生物學(xué)檢驗菌落總數(shù)測定》.
 
本標準與GB/T4789.2-2008相比,主要修改如下:
 
修改了標準的中英文名稱;
修改了菌落總數(shù)計算公式中的解釋;
修改了培養(yǎng)基和試劑; 
 
本標準的附錄A是規(guī)范性附錄.
本標準所代替標準的歷次版本發(fā)布情況為:
GB4789.2-1984、GB4789.2-1994、GB/T4789.2-2003、GB/T4789.2-2008.
 
食品安全國家標準
 
食品微生物學(xué)檢驗菌落總數(shù)測定
 
范圍
 
本標準規(guī)定了食品中菌落總數(shù)(Aerobicplatecount)的測定方法.
 
本標準適用于食品中菌落總數(shù)的測定.
 
術(shù)語和定義
 
菌落總數(shù)aerobicplatecount
 
食品檢樣經(jīng)過處理,在一定條件下(如培養(yǎng)基、培養(yǎng)溫度和培養(yǎng)時間等)培養(yǎng)后,所得每g(毫升)檢樣中形成的微生物菌落總數(shù).
 
設(shè)備和材料
 
除微生物實驗室常規(guī)滅菌及培養(yǎng)設(shè)備外,其他設(shè)備和材料如下:
 
恒溫培養(yǎng)箱:36攝氏度±1攝氏度,30攝氏度±1攝氏度
冰箱:2攝氏度至5攝氏度
恒溫水浴箱:46±1攝氏度
天平:感量為0.1g
均質(zhì)器
振蕩器
 
無菌吸管:1毫升(具0.01毫升刻度)、10毫升(具0.1毫升刻度)或微量移液器及吸頭.
無菌錐形瓶:容量250毫升、500毫升.
無菌培養(yǎng)皿:直徑90毫米.
pH計或pH比色管或精密pH試紙.
放大鏡或/和菌落計數(shù)器.
 
培養(yǎng)基和試劑
 
平板計數(shù)瓊脂培養(yǎng)基:見附錄A中A.1.
磷酸鹽緩沖液:見附錄A中A.2.
無菌生理鹽水:見附錄A中A.3
 
檢驗程序
 
菌落總數(shù)的檢驗程序見圖1
圖一 菌落總數(shù)的檢驗程序圖片
 
操作步驟
 
樣品的稀釋
 
固體和半固體樣品:稱取25g樣品置盛有225毫升磷酸鹽緩沖液或生理鹽水的無菌均質(zhì)杯內(nèi),8000r/分鐘至10000r/分鐘均質(zhì)1分鐘至2分鐘,或放入盛有225毫升稀釋液的無菌均質(zhì)袋中,用拍擊式均質(zhì)器拍打1分鐘至2分鐘,制成1:10的樣品勻液.
 
液體樣品:以無菌吸管吸取25毫升樣品置盛有225毫升磷酸鹽緩沖液或生理鹽水的無菌錐形瓶(瓶內(nèi)預(yù)置適當(dāng)數(shù)量的無菌玻璃珠)中,充分混勻,制成1:10的樣品勻液.
 
用1毫升無菌吸管或微量移液器吸取1:10樣品勻液1毫升,沿管壁緩慢注于盛有9毫升稀釋液的無菌試管中(注意吸管或吸頭尖端不要觸及稀釋液面),振搖試管或換用1支無菌吸管反復(fù)吹打使其混合均勻,制成1:100的樣品勻液.
 
按6.1.3操作程序,制備10倍系列稀釋樣品勻液.每遞增稀釋一次,換用1次1毫升無菌吸管或吸頭.
 
根據(jù)對樣品污染狀況的估計,選擇2個至3個適宜稀釋度的樣品勻液(液體樣品可包括原液),在進行10倍遞增稀釋時,吸取1毫升樣品勻液于無菌平皿內(nèi),每個稀釋度做兩個平皿.同時,分別吸取1毫升空白稀釋液加入兩個無菌平皿內(nèi)作空白對照.
 
及時將15毫升至20毫升冷卻到46攝氏度的平板計數(shù)瓊脂培養(yǎng)基(可放置于46±1攝氏度恒溫水浴箱中保溫)傾注平皿,并轉(zhuǎn)動平皿使其混合均勻.
 
培養(yǎng)
 
待瓊脂凝固后,將平板翻轉(zhuǎn),36±1攝氏度培養(yǎng)48h±2h.水產(chǎn)品30±1攝氏度培養(yǎng)72h±3h.
 
如果樣品中可能含有在瓊脂培養(yǎng)基表面彌漫生長的菌落時,可在凝固后的瓊脂表面覆蓋一薄層瓊脂培養(yǎng)基(約4毫升),凝固后翻轉(zhuǎn)平板,按6.2.1條件進行培養(yǎng).
 
菌落計數(shù)
 
可用肉眼觀察,必要時用放大鏡或菌落計數(shù)器,記錄稀釋倍數(shù)和相應(yīng)的菌落數(shù)量.菌落計數(shù)以菌落形成單位(colony-for分鐘gunits,CFU)表示.
 
選取菌落數(shù)在30CFU至300CFU之間、無蔓延菌落生長的平板計數(shù)菌落總數(shù).低于30CFU的平板記錄具體菌落數(shù),大于300CFU的可記錄為多不可計.每個稀釋度的菌落數(shù)應(yīng)采用兩個平板的平均數(shù).
 
其中一個平板有較大片狀菌落生長時,則不宜采用,而應(yīng)以無片狀菌落生長的平板作為該稀釋度的菌落數(shù);若片狀菌落不到平板的一半,而其余一半中菌落分布又很均勻,即可計算半個平板后乘以2,代表一個平板菌落數(shù).
 
當(dāng)平板上出現(xiàn)菌落間無明顯界線的鏈狀生長時,則將每條單鏈作為一個菌落計數(shù).
 
結(jié)果與報告
 
菌落總數(shù)的計算方法
 
若只有一個稀釋度平板上的菌落數(shù)在適宜計數(shù)范圍內(nèi),計算兩個平板菌落數(shù)的平均值,再將平均值乘以相應(yīng)稀釋倍數(shù),作為每g(毫升)樣品中菌落總數(shù)結(jié)果.
 
若有兩個連續(xù)稀釋度的平板菌落數(shù)在適宜計數(shù)范圍內(nèi)時,按公式(1)計算:
 
計算公式圖片一
 
式中:
 
N:樣品中菌落數(shù);
 
∑C:平板(含適宜范圍菌落數(shù)的平板)菌落數(shù)之和;
 
n1:第一稀釋度(低稀釋倍數(shù))平板個數(shù);
 
n2:第二稀釋度(高稀釋倍數(shù))平板個數(shù);
 
d:稀釋因子(第一稀釋度).
 
公式圖片二
 
若所有稀釋度的平板上菌落數(shù)均大于300CFU,則對稀釋度最高的平板進行計數(shù),其他平板可記錄為多不可計,結(jié)果按平均菌落數(shù)乘以相應(yīng)稀釋倍數(shù)計算.
 
若所有稀釋度的平板菌落數(shù)均小于30CFU,則應(yīng)按稀釋度最低的平均菌落數(shù)乘以稀釋倍數(shù)計算.
 
若所有稀釋度(包括液體樣品原液)平板均無菌落生長,則以小于1乘以稀釋倍數(shù)計算.
 
若所有稀釋度的平板菌落數(shù)均不在30CFU至300CFU之間,其中一部分小于30CFU或大于300CFU時,則以最接近30CFU或300CFU的平均菌落數(shù)乘以稀釋倍數(shù)計算.
 
菌落總數(shù)的報告
 
菌落數(shù)小于100CFU時,按“四舍五入”原則修約,以整數(shù)報告.
 
菌落數(shù)大于或等于100CFU時,第3位數(shù)字采用“四舍五入”原則修約后,取前2位數(shù)字,后面用0代替位數(shù);也可用10的指數(shù)形式來表示,按“四舍五入”原則修約后,采用兩位有效數(shù)字.
 
若所有平板上為蔓延菌落而無法計數(shù),則報告菌落蔓延.
 
若空白對照上有菌落生長,則此次檢測結(jié)果無效.
 
稱重取樣以CFU/g為單位報告,體積取樣以CFU/毫升為單位報告.
 
附錄A
 
(規(guī)范性附錄)
 
培養(yǎng)基和試劑
 
平板計數(shù)瓊脂(platecountagar,PCA)培養(yǎng)基成分
 
胰蛋白胨5.0g,酵母浸膏2.5g,葡萄糖1.0g,瓊脂15.0g,蒸餾水1000毫升,pH7.0±0.2
 
制法
 
將上述成分加于蒸餾水中,煮沸溶解,調(diào)節(jié)pH.分裝試管或錐形瓶,121攝氏度高壓滅菌15分鐘.
 
磷酸鹽緩沖液
 
成分
 
磷酸二氫鉀(KH2PO4)34.0g,蒸餾水500毫升,pH7.2
 
制法
 
貯存液:稱取34.0g的磷酸二氫鉀溶于500毫升蒸餾水中,用大約175毫升的1mol/L氫氧化鈉溶液調(diào)節(jié)pH,用蒸餾水稀釋到1000毫升后貯存于冰箱.
 
稀釋液:取貯存液1.25毫升,用蒸餾水稀釋至1000毫升,分裝于適宜容器中,121攝氏度高壓滅菌15分鐘.
 
無菌生理鹽水
 
成分
 
氯化鈉8.5g,蒸餾水1000毫升
 
制法
 
稱取8.5g氯化鈉溶于1000毫升蒸餾水中,121攝氏度高壓滅菌15分鐘.